Мультимодальна характеристика особливостей перебігу стромального герпетичного кератиту за клінічними, функціональними, лабораторними та морфометричними показниками

Автор(и)

  • І. Р. Максимова КНТ «Дніпропетровська обласна клінічна офтальмологічна лікарня», Дніпро
  • Н. І. Храменко ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

DOI:

https://doi.org/10.31288/Ukr.j.ophthalmol.202631221

Ключові слова:

герпетичний кератит, вірус простого герпесу, гемодинаміка судин ока, сльозопродукція, морфометрія рогівки, рогівка

Анотація

Мета. Визначити особливості перебігу стромального герпетичного кератиту (СГК) на основі комплексної оцінки клінічних, морфометричних, лабораторних і функціональних показників.
Матеріал і методи. Обстежено 60 пацієнтів із монолатеральним СГК, середній вік – 39,4 ± 9,5 р. Гемодинаміку в очній артерії (ОА), центральній артерії (ЦАС) та вені сітківки (ЦВС) досліджували методом доплерографії (Toshiba Nemio-20). Кератометрію, пахіметрію та денситометрію рогівки визначали за допомогою Pentacam AXL (Oculus, Німеччина), товщину епітелію рогівки – методом ОКТ (Optopol REVO NX, Польща). Неоваскуляризацію рогівки (НВР) оцінювали за площею та глибиною інвазії судин, SpO2 – методом пульсоксиметрії, IgG до ВПГ 1/2 та ЦМВ – методом ІФА. Сльозопродукцію та стабільність слізної плівки оцінювали за тестами Ширмера II та Норна.
Результати. У хворих на СГК встановлено зростання частоти виразки рогівки зі збільшенням площі НВР (p = 0,0006). Периферична виразка переважала при НВР одного квадранта, тоді як центральна – при ураженні двох і більше квадрантів (χ² = 4,3; p = 0,04). Зі збільшенням площі НВР зростала частота тотального набряку рогівки. Денситометрія на 20,5% (p = 0,009) вище при тотальному набряку порівняно з фокальним. При поширенні НВР ≥2 квадрантів значно підвищувався ризик формування змішаної форми НВР (p < 0,001). Частота виразки становила 25,9% при поверхневій, 16,7% – при глибокій та 100% – при змішаній НВР. Показники гемодинаміки ЦАС не залежали від наявності НВР і виразки, тоді як швидкість кровотоку в ЦВС була вищою на 7,2% при НВР (р < 0,05). Наявність НВР асоціювалася зі зниженням стабільності слізної плівки на 23,6% (p = 0,004). Зв'язку між рівнями IgG до ВПГ та ЦМВ і характеристиками НВР та виразкою рогівки не виявлено.
Висновки. Прогресування стромального ушкодження рогівки та формування виразкового дефекту пов’язано з вираженістю НВР: зі збільшенням її площі частота виразок зростає (p = 0,0006), а змішаний тип НВР підвищує її ризик у 4,3 раза (p < 0,001). Щодо прогнозування ризику виразки рогівки найбільш інформативними є показники глибини НВР та кератометрії. НВР асоціюється з помірними змінами регіонарної гемодинаміки та вираженим порушенням сльозопродукції із нестабільністю слізної плівки.

Біографії авторів

І. Р. Максимова, КНТ «Дніпропетровська обласна клінічна офтальмологічна лікарня», Дніпро

Максимова І. Р. — лікар-офтальмолог КНТ «Дніпропетровська обласна клінічна офтальмологічна лікарня»,  Дніпро

Н. І. Храменко, ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

Храменко Н. І., лікар-офтальмолог, к. м. н., ст. наук. співр. відділу діагностичних досліджень органа зору ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В. П. Філатова НАМН України».

Посилання

Liesegang TJ, Melton LJ 3rd, Daly PJ, Ilstrup DM. Epidemiology of ocular herpes simplex. Incidence in Rochester, Minn, 1950 through 1982. Arch Ophthalmol. 1989 Aug;107(8):1155-9. https://doi.org/10.1001/archopht.1989.01070020221029

Park PJ, Chang M, Garg N, Zhu J, Chang JH, Shukla D. Corneal lymphangiogenesis in herpetic stromal keratitis. Surv Ophthalmol. 2015 Jan-Feb;60(1):60-71. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2014.06.001

Chodosh J, Ung L. Adoption of Innovation in Herpes Simplex Virus Keratitis. Cornea. 2020 Nov;39 Suppl 1(1):S7-S18.https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000002425

Farooq AV, Shukla D. Herpes simplex epithelial and stromal keratitis: an epidemiologic update. Surv Ophthalmol. 2012 Sep;57(5):448-62. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2012.01.005

McCormick I, James C, Welton NJ, Mayaud P, Turner KME, Gottlieb SL, et al. Incidence of herpes simplex virus keratitis and other ocular disease: global review and estimates. Ophthalmic Epidemiol. 2022 Aug;29(4):353-362. https://doi.org/10.1080/09286586.2021.1962919

Young RC, Hodge DO, Liesegang TJ, Baratz KH. Incidence, recurrence, and outcomes of herpes simplex virus eye disease in Olmsted County, Minnesota, 1976-2007: the effect of oral antiviral prophylaxis. Arch Ophthalmol. 2010 Sep;128(9):1178-83. https://doi.org/10.1001/archophthalmol.2010.187

Musa M, Enaholo E, Aluyi-Osa G, Atuanya GN, Spadea L, Salati C, Zeppieri M. Herpes simplex keratitis: A brief clinical overview. World J Virol. 2024 Mar 25;13(1):89934.https://doi.org/10.5501/wjv.v13.i1.89934

Kim GN, Yoo WS, Park MH, Chung JK, Han YS, Chung IY, et al. Clinical Features of Herpes Simplex Keratitis in a Korean Tertiary Referral Center: Efficacy of Oral Antiviral and Ascorbic Acid on Recurrence. Korean J Ophthalmol. 2018 Oct;32(5):353-360. https://doi.org/10.3341/kjo.2017.0131

Lobo AM, Agelidis AM, Shukla D. Pathogenesis of herpes simplex keratitis: The host cell response and ocular surface sequelae to infection and inflammation. Ocul Surf. 2019 Jan;17(1):40-49. https://doi.org/10.1016/j.jtos.2018.10.002

Liesegang TJ. Classification of herpes simplex virus keratitis and anterior uveitis. Cornea. 1999 Mar;18(2):127-43. https://doi.org/10.1097/00003226-199903000-00001

Holland EJ, Schwartz GS. Classification of herpes simplex virus keratitis. Cornea. 1999 Mar;18(2):144-54. https://doi.org/10.1097/00003226-199903000-00002

Nanji A, Redd T, Chamberlain W, Schallhorn JM, Chen S, Ploner S, Maier A, Fujimoto JG, Jia Y, Huang D, Li Y. Application of Corneal Optical Coherence Tomography Angiography for Assessment of Vessel Depth in Corneal Neovascularization. Cornea. 2020 May;39(5):598-604. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000002232

Zheng G, Gastwirth JL. On estimation of the variance in Cochran-Armitage trend tests for genetic association using case-control studies. Stat Med. 2006 Sep 30;25(18):3150-9. https://doi.org/10.1002/sim.2250

Spineli, L. M. Local inconsistency detection using the Kullback-Leibler divergence measure. Systematic Reviews, 13, 261 (2024). https://doi.org/10.1186/s13643-024-02680-4

Wang L, Wang R, Xu C, Zhou H. Pathogenesis of Herpes Stromal Keratitis: Immune Inflammatory Response Mediated by Inflammatory Regulators. Front Immunol. 2020 May 13;11:766. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00766

Azar DT. Corneal angiogenic privilege: angiogenic and antiangiogenic factors in corneal avascularity, vasculogenesis, and wound healing (an American Ophthalmological Society thesis). Trans Am Ophthalmol Soc. 2006;104:264-302.

Cursiefen C, Küchle M, Naumann GO. Angiogenesis in corneal diseases: histopathologic evaluation of 254 human corneal buttons with neovascularization. Cornea. 1998 Nov;17(6):611-3. https://doi.org/10.1097/00003226-199811000-00008

Abdelfattah NS, Amgad M, Zayed AA, Salem H, Elkhanany AE, Hussein H, Abd El-Baky N. Clinical correlates of common corneal neovascular diseases: a literature review. Int J Ophthalmol. 2015 Feb 18;8(1):182-93. doi: 10.3980/j.issn.2222-3959.2015.01.32.

Sharif Z, Sharif W. Corneal neovascularization: updates on pathophysiology, investigations & management. Rom J Ophthalmol. 2019 Jan-Mar;63(1):15-22.https://doi.org/10.22336/rjo.2019.4

Drzyzga Ł, Śpiewak D, Dorecka M, Wyględowska-Promieńska D. Available Therapeutic Options for Corneal Neovascularization: A Review. Int J Mol Sci. 2024 May 17;25(10):5479. https://doi.org/10.3390/ijms25105479

Ahmad A, Nawaz MI. Molecular mechanism of VEGF and its role in pathological angiogenesis. J Cell Biochem. 2022 Dec;123(12):1938-1965. https://doi.org/10.1002/jcb.30344

Akinsiku S, Shukla D. Molecular Pathways Driving Corneal Neovascularization in Herpes Simplex Keratitis. Pathogens. 2026 Feb 7;15(2):186. https://doi.org/10.3390/pathogens15020186

Giménez F, Suryawanshi A, Rouse BT. Pathogenesis of herpes stromal keratitis--a focus on corneal neovascularization. Prog Retin Eye Res. 2013 Mar;33:1-9. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2012.07.002

Schmidt VJ, Hilgert JG, Covi JM, Leibig N, Wietbrock JO, et al. Flow increase is decisive to initiate angiogenesis in veins exposed to altered hemodynamics. PLoS One. 2015;10(1):e0117407. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0117407

Rao P, Suvas S. Development of Inflammatory Hypoxia and Prevalence of Glycolytic Metabolism in Progressing Herpes Stromal Keratitis Lesions. J Immunol. 2019 Jan 15;202(2):514-526. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1800422

Wilhelmus KR, Sugar J, Hyndiuk RA, Stulting RD. Corneal thickness changes during herpes simplex virus disciform keratitis. Cornea. 2004 Mar;23(2):154-7. https://doi.org/10.1097/00003226-200403000-00008

Lu L, Palioura S. Management of Stromal Herpes Simplex Virus Keratitis With Epithelial Ulceration Using Optical Coherence Tomography-Generated Corneal Thickness Maps. Cornea. 2020 Dec;39(12):1566-1570. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000002423

Abtahi MA, Beheshtnejad AH, Latifi G, Akbari-Kamrani M, Ghafarian S, Masoomi A, Sonbolastan SA, Jahanbani-Ardakani H, Atighechian M, Banan L, Nouri H, Abtahi SH. Corneal Epithelial Thickness Mapping: A Major Review. J Ophthalmol. 2024 Jan 2;2024:6674747. https://doi.org/10.1155/2024/6674747

Versura P, Giannaccare G, Pellegrini M, Sebastiani S, Campos EC. Neurotrophic keratitis: current challenges and future prospects. Eye Brain. 2018 Jun 28;10:37-45.https://doi.org/10.2147/EB.S117261

Messmer EM. The pathophysiology, diagnosis, and treatment of dry eye disease. Dtsch Arztebl Int. 2015 Jan 30;112(5):71-81; quiz 82. https://doi.org/10.3238/arztebl.2015.0071

Humayun S, Noor M, Shahid M, Naqvi SAH, Ishaq M, Humayun Q. Diagnosis of Dry Eye Syndrome Using Ocular Surface Disease Index, Tear Film Break-up Time, and Schirmer Test. J Coll Physicians Surg Pak. 2024 Mar;34(3):308-312. https://doi.org/10.29271/jcpsp.2024.03.308

Ma X, Lu Y. Bilateral tear film alterations in patients with unilateral quiescent herpes simplex keratitis. Acta Ophthalmol. 2017 Sep;95(6):629-633. https://doi.org/10.1111/aos.13329

M'Garrech M, Rousseau A, Kaswin G, Sauer A, Barreau E, Bourcier T, Labetoulle M. Impairment of lacrimal secretion in the unaffected fellow eye of patients with recurrent unilateral herpetic keratitis. Ophthalmology. 2013 Oct;120(10):1959-67. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2013.02.037

Shoji J, Sakimoto T, Inada N, Kamei Y, Matsubara M, Takamura E, Sawa M. A diagnostic method for herpes simplex keratitis by simultaneous measurement of viral DNA and virus-specific secretory IgA in tears: an evaluation. Jpn J Ophthalmol. 2016 Jul;60(4):294-301. https://doi.org/10.1007/s10384-016-0448-y

Chen S, Peng Q, Wang H, Xie J, Cao H, Xu X. Seroprevalence and Clinical Insights of Ocular Herpesvirus Infections: A Cross-Sectional Study Evaluating ELISA as a Diagnostic Tool. Infect Drug Resist. 2025 Jun 19;18:3063-3070. https://doi.org/10.2147/IDR.S527047

Wang J, Cherfan DG, Goshe JM. Utility of HSV Serology for Chronic Corneal Pathology. Eye Contact Lens. 2020 May;46(3):190-193. https://doi.org/10.1097/ICL.0000000000000635

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-06-29

Як цитувати

[1]
Максимова, І.Р. і Храменко, Н.І. 2026. Мультимодальна характеристика особливостей перебігу стромального герпетичного кератиту за клінічними, функціональними, лабораторними та морфометричними показниками. Ukrainian Journal of Ophthalmology . 3 (Чер 2026), 12–21. DOI:https://doi.org/10.31288/Ukr.j.ophthalmol.202631221.

Номер

Розділ

Питання клінічної офтальмології

Статті цього автора (авторів), які найбільше читають

1 2 > >> 

Схожі статті

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 > >> 

Ви також можете розпочати розширений пошук схожих статей для цієї статті.