Вплив інгібітора ангіотензин-перетворюючого ферменту зофеноприлу на гідро- та гемодинаміку ока у кроликів з експериментальною глаукомою

Автор(и)

  • І. М. Михейцева ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"
  • Н. І. Храменко ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"
  • С. Г. Коломійчук ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії імені В.П. Філатова НАН України»
  • Т. І. Сіроштаненко ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"
  • Майяр Алобісі ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

DOI:

https://doi.org/10.31288/oftalmolzh202564247

Ключові слова:

глаукома, патогенез, інгібітор АПФ зофеноприл, цільовий внутрішньоочний тиск, гідродинаміка ока, гемодинаміка ока, реографічний коефіцієнт, експеримент

Анотація

Мета. Дослідити вплив інгібітора ангіотензин-перетворюючого ферменту зофеноприлу на динаміку рівня внутрішньоочного тиску (ВОТ), реографічний коефіцієнт (RQ) та тонографічні показники ока при моделюванні адреналін-індукованої глаукоми (АІГ) у кроликів.

Методи. У першій групі кроликів (12 тварин) глаукому викликали розчином адреналіну (1:1000), 0,1 мл якого вводили у вушну вену через день протягом трьох місяців (40 ін’єкцій). У другій групі (12 тварин) при моделюванні АІГ тварини отримували per os 1 мл водної суспензії зофеноприлу (1 мг/кг ваги) щоденно протягом трьох місяців. Контроль (10 кроликів) — інтактні тварини. Стан очей тварин оцінювали офтальмоскопічно та біомікроскопічно. Дослідження проведені наприкінці експерименту - через 3 місяці моделювання АІГ. ВОТ у кроликів вимірювали за допомогою апланаційного тонометра Маклакова. Вивчали гемодинаміку та гідродинаміку ока. Дані статистично обробляли з використанням критерію Крускала-Уолліса і Манна-Уітні.

Результати. При АІГ у кроликів показник ВОТ на 30-ту, 60-ту та 90-ту добу статистично значуще підвищився на 28,3%, 34,2% та 46,7% відповідно, по відношенню до вихідних даних (р<0,05). При порівнянні з контролем теж відзначено зростання ВОТ на всіх строках спостереження.
При застосуванні зофеноприлу на тлі АІГ отримано зниження ВОТ на 60-ту добу — на 19,6 %, на 90-ту добу — на 29,6 % по відношенню до групи з АІГ.
У тварин з АІГ виявлено зниження реографічного коефіцієнта на 37,0%, відтоку камерної вологи (С) на 36,8%, зростання продукції камерної вологи (F) на 23,0% та тонографічного офтальмотонусу (P0) на 61,4% відносно контролю.
Застосування зофеноприлу на тлі АІГ викликало підвищення RQ на 45,7%, С — на 41,7%, зниження рівня F на 24,1%, а P0 на 22,4% відносно АІГ без зофеноприлу.

Висновки. На моделі АІГ у кроликів встановлено порушення показників очного кровотоку та гідродинаміки ока на тлі підвищеного офтальмотонусу. Застосування зофеноприлу позитивно вплинуло на функціональний стан очей: на рівень офтальмотонусу, показники очного кровотоку та циркуляції внутрішньоочної рідини.

Біографії авторів

І. М. Михейцева, ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

Михейцева І. М., д-р біол. наук, зав. лаб. біохімії, ст. наук. співроб. лабораторії біохімії, ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В. П. Філатова НАМН України», Одеса, Україна. 

Н. І. Храменко, ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

Храменко Н. І., канд. мед. наук; ст. дослід., т.в.о. завідуючої відділу діагностичних досліджень органу зору ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В. П. Філатова НАМН України», Одеса, Україна.

С. Г. Коломійчук, ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії імені В.П. Філатова НАН України»

Коломійчук С. Г., наук. співроб. лабораторії біохімії, ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В. П. Філатова НАМН України», Одеса, Україна

Т. І. Сіроштаненко, ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

Сіроштаненко Т. І., мол. наук. співроб. лабораторії біохімії, ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В. П. Філатова НАМН України», Одеса, Україна

Майяр Алобісі, ДУ "Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П.Філатова НАМН України"

Майяр Алобісі, лікар, ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В. П. Філатова НАМН України», Одеса,Україна

Посилання

1. Chan JW, Chan NCY, Sadun AA. Glaucoma as Neurodegeneration in the Brain. Eye Brain. 2021;13:21-28. https://doi.org/10.2147/EB.S293765

2. Bou Ghanem GO, Wareham LK, Calkins DJ. Addressing neurodegeneration in glaucoma: Mechanisms, challenges, and treatments. Prog Retin Eye Res. 2024;100:101261. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2024.101261

3. Nislawati R, Taufik Fadillah Zainal A, Ismail A, Waspodo N, Kasim F, Gunawan AMAK. Role of hypertension as a risk factor for open-angle glaucoma: a systematic review and meta-analysis. BMJ Open Ophthalmol. 2021;6(1):e000798. https://doi.org/10.1136/bmjophth-2021-000798

4. Mikheytseva IM. [Role of trigger endothelial, neuronal and integrative mechanisms in the development of glaucomatous process and new pathogenetic therapeutic approaches to primary glaucoma]. [Dissertation for the Degree of Dr Sc (Biol)]. Lugansk; 2013. Ukrainian.

5. Luo X, Shen YM, Jiang MN, Lou XF, Shen Y. Ocular Blood Flow Autoregulation Mechanisms and Methods. J Ophthalmol. 2015;2015:864871. https://doi.org/10.1155/2015/864871

6. Zhang CJ, Jin ZB. Homeostasis and dyshomeostasis of the retina. Curr Med. 2023;2(4). https://doi.org/10.1007/s44194-023-00021-6

7. Alarcon-Martinez L, Shiga Y, Villafranca-Baughman D, Cueva Vargas JL, Vidal Paredes IA, Quintero H, et al. Neurovascular dysfunction in glaucoma. Prog Retin Eye Res. 2023;97:101217. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2023.101217

8. Wang X, Wang M, Liu H, Mercieca K, Prinz J, Feng Y, et al. The Association between Vascular Abnormalities and Glaucoma - What Comes First? Intern J Mol Sciences.2023;24(17):13211. https://doi.org/10.3390/ijms241713211

9. Szewczuk A, Wawrzyniak ZM, Szaflik JP, Zaleska-Żmijewska A. Is Primary Open-Angle Glaucoma a Vascular Disease? Assessment of the Relationship between Retinal Arteriolar Morphology and Glaucoma Severity Using Adaptive Optics. Journal of Clinical Medicine. 2024;13(2):478. https://doi.org/10.3390/jcm13020478

10. Arrigo A, Aragona E, Saladino A, Arrigo D, Fantaguzzi F, Battaglia Parodi M, et al. Cognitive Dysfunctions in Glaucoma: An Overview of Morpho-Functional Mechanisms and the Impact on Higher-Order Visual Function. Front Aging Neurosci. 2021;13:747050. https://doi.org/10.3389/fnagi.2021.747050

11. Zhou W, Sabel BA. Vascular dysregulation in glaucoma: retinal vasoconstriction and normal neurovascular coupling in altitudinal visual field defects. EPMA J. 2023;14(1):87-99. https://doi.org/10.1007/s13167-023-00316-6

12. Fernández-Albarral JA, Ramírez AI, de Hoz R, Matamoros JA, Salobrar-García E, Elvira-Hurtado L, et al. Glaucoma: from pathogenic mechanisms to retinal glial cell response to damage. Front Cell Neurosci.2024;18:1354569.https://doi.org/10.3389/fncel.2024.1354569

13. Holappa M, Vapaatalo Н, Vaajanen А. Many Faces of Renin-angiotensin System - Focus on Eye. Open Ophthalmol. J. 2017; 19(11):122-42. https://doi.org/10.2174/1874364101711010122

14. Donnarumma E, Ali MJ, Rushing АМ et al. Zofenopril Protects Against Myocardial Ischemia-Reperfusion Injury by Increasing Nitric Oxide and Hydrogen Sulfide Bioavailability. J Am Heart Assoc. 2016; 5. e003531.https://doi.org/10.1161/JAHA.116.003531

15. Bucci M, Vellecco V, Cantalupo А. et al. Hydrogen sulfide accounts for the peripheral vascular effects of zofenopril independently of ACE inhibition. Cardiovasc. Res. 2014;102(1):138-47. https://doi.org/10.1093/cvr/cvu026

16. Mikheytseva I, Kolomiichuk S, Siroshtanenko T. The role of changes in the hydrogen sulfide level in eye tissues on the development of experimental glaucoma. Fiziol Zh. 2024; 70(6), 24-30. https://doi.org/10.15407/fz70.06.024

17. Mikheytseva IN. [Glaucoma models: advantages and shortcomings. Adrenaline-induced glaucoma as an adequate model of human glaucomatous process]. Oftalmol Zh. 2011;3:89-92. Russian.

18. Wagenmakers E, Kucharský Š, van Doorn J, van den Bergh D. Accessible and Sustainable Statistics with JASP. 2023.https://doi.org/10.31234/osf.io/ud2vj

19. Wareham LK, Calkins DJ. The Neurovascular Unit in Glaucomatous Neurodegeneration. Front Cell Dev Biol. 2020;8:452.https://doi.org/10.3389/fcell.2020.00452

20. Feng Y, Prokosch V, Liu H. Current Perspective of Hydrogen Sulfide as a Novel Gaseous Modulator of Oxidative Stress in Glaucoma. Antioxidants (Basel). 2021;10(5):671. https://doi.org/10.3390/antiox10050671

21. Salvi A, Bankhele Р, Jamil J et al. Effect of Hydrogen Sulfide Donors on Intraocular Pressure in Rabbits. 2016;32(6) :371-75. https://doi.org/10.1089/jop.2015.0144

22. Mikheytseva IN, Kolomiichuk SG, Siroshtanenko TI. Тherapy with the angiotensin-converting enzyme inhibitor zofenopril as a new direction in the treatment of primary glaucoma. In: The Functioning of Healthcare in EU Countries and Ukraine in Maintaining Sustainable Development (March 19-20, 2025. Riga, the Republic of Latvia): International scientific conference. Riga, Latvia: Baltija Publishing:45-8. https://doi.org/10.30525/978-9934-26-549-5-11

23. Kulkarni KH, Monjok EM, Zeyssig R at al. Effect of Hydrogen Sulfide on Sympathetic Neurotransmission and Catecholamine Levels in Isolated Porcine Iris-Ciliary Body. Neurochem. Res. 2009; 34: 400-06.https://doi.org/10.1007/s11064-008-9793-7

24. Shnayder NA, Petrova ММ, Popova ТЕ et al. Prospects for the personalized multimodal therapy approach to pain management via action on NO and NOS. Molecules. 2021;26(9). https://doi.org/10.3390/molecules26092431

25. Wallace JL, Ferraz JG, Muscara MN. Hydrogen sulfide: an endogenous mediator of resolution of inflammation and injury. Antioxid. Redox Signal. 2012;17(1):58-67. https://doi.org/10.1089/ars.2011.4351

26. Tang G, Wu L, Liang W, Wang R. Direct stimulation of K(ATP) channels by exogenous and endogenous hydrogen sulfide in vascular smooth muscle cells. Mol Pharmacol. 2005; 68(6):1757-64. https://doi.org/10.1124/mol.105.017467

27. Terzuoli E, Monti М, Vellecco V et al. Characterization of zofenoprilat as an inducer of functional angiogenesis through increased H2S availability. Br J Pharmacol. 2015;172(12):2961-73.https://doi.org/10.1111/bph.13101

28. Cyr AR, Huckaby LV, Shiva SS, Zuckerbraun BS. Nitric Oxide and Endothelial Dysfunction. Crit Care Clin. 2020;36(2):307-321.https://doi.org/10.1016/j.ccc.2019.12.009

29. Reina-Torres E, De Ieso ML, Pasquale LR, Madekurozwa M, van Batenburg-Sherwood J, Overby DR, et al. The vital role for nitric oxide in intraocular pressure homeostasis. Prog Retin Eye Res. 2021;83:100922. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2020.100922

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-12-29

Як цитувати

[1]
Михейцева, І.М. et al. 2025. Вплив інгібітора ангіотензин-перетворюючого ферменту зофеноприлу на гідро- та гемодинаміку ока у кроликів з експериментальною глаукомою. Ukrainian Journal of Ophthalmology . 6 (Груд 2025), 42–47. DOI:https://doi.org/10.31288/oftalmolzh202564247.

Номер

Розділ

Експериментальні дослідження

Статті цього автора (авторів), які найбільше читають

1 2 > >> 

Схожі статті

<< < 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 > >> 

Ви також можете розпочати розширений пошук схожих статей для цієї статті.