Морфологічні зміни зорового нерва після травми за умов застосування стовбурових клітин в експерименті

Автор(и)

  • Ю. В. Чепурний Національний медичний університет імені О. О. Богомольця; Київ (Україна)
  • А. В. Копчак Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)
  • А. В. Корсак Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)
  • В. В. Ліходієвський Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)
  • О. І. Ковальчук Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)
  • С. С. Олефір Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)
  • А. О. Забіла Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)
  • Ю. Б. Чайковський Національний медичний університет ім. О.О. Богомольця; Київ (Україна)

DOI:

https://doi.org/10.31288/oftalmolzh201755055

Ключові слова:

зоровий нерв, травма, регенерація, стовбурові клітини

Анотація

Вступ. Травма зорового аналізатора та її наслідки значно знижують якість життя. Питання щодо пошуку ефективних методів стимуляції відновлення зорового нерва залишається відкритим.

Мета. Вивчити структурні зміни зорового нерва після експериментальної травми та застосування стовбурових клітин.

Матеріал і методи. За допомогою загальногістологічного та нейрогістологічного методів досліджено зоровий нерв щурів після експериментальної травми без введення (перша група) та з введенням (друга група) стовбурових клітин, отриманих із волосяних фолікулів вібрис сингенних особин.

Результати. Травма зорового нерва викликає його дегенерацію. Застосування стовбурових клітин ініціює прискорення та підвищення якості регенерації зорового нерву, про що свідчить поява молодих новоутворених нервових волокон, колонок гліальних клітин, які складаються переважно із олігодендроцитів, зменшення гліального рубця за рахунок зниження кількості астроцитів, та прискорена елімінація залишків зруйнованого мієліну.

Висновок. Введення стовбурових клітин, отриманих із волосяних фолікулів вібрис сингенних особин, у періоді після травми зорового нерву сприяє його відновленню.

Посилання

1.Watanabe M. Regeneration of optic nerve fibers of adult mammals. Dev Growth Differ. 2010 Sep;52(7):567-76.https://doi.org/10.1111/j.1440-169X.2010.01203.x

2.Wender M, Adamczewska-Goncerzewicz Z, Goncerzewicz A. Myelin lipids in Wallerian degeneration of the rabbit optic nerve. Exp Pathol (Jena). 1979;17(6):334-9.https://doi.org/10.1016/S0014-4908(79)80048-4

3.Gall C, Lucklum J, Sabel BA, Franke GH. Vision- and Health-Related Quality of Life in Patients with Visual Field Loss after Postchiasmatic Lesions. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2009; 50:2765-76.https://doi.org/10.1167/iovs.08-2519

4.Greenwald B, Kapoor N, Singh A. Visual impairments in the first year after traumatic brain injury. Brain Inj. 2012;26(11):1338-59.https://doi.org/10.3109/02699052.2012.706356

5.Fischer D, Leibinger M. Promoting optic nerve regeneration. Prog Retin Eye Res. 2012 Nov;31(6):688-701.https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2012.06.005

6.Forbes SJ, Rosenthal N. Preparing the ground for tissue regeneration: from mechanism to therapy. Nat Med. 2014 Aug;20(8):857-69.https://doi.org/10.1038/nm.3653

7.Maclaren RE. Regeneration and transplantation of the optic nerve: developing a clinical strategy. Br J Ophthalmol. 1998 May;82(5):577-83.https://doi.org/10.1136/bjo.82.5.577

8.Pernet V, Joly S, Dalkara D, et al. Long-distance axonal regeneration induced by CNTF gene transfer is impaired by axonal misguidance in the injured adult optic nerve. Neurobiol Dis. 2013 Mar;51:202-13.https://doi.org/10.1016/j.nbd.2012.11.011

9.Pernet V, Joly S, Jordi N, et al. Misguidance and modulation of axonal regeneration by Stat3 and Rho/ROCK signaling in the transparent optic nerve. Cell Death Dis. 2013 Jul 18;4:e734.https://doi.org/10.1038/cddis.2013.266

10.Pernet V, Schwab M. Lost in the jungle: new hurdles for optic nerve axon regeneration. Trends Neurosci. 2014 Jul;37(7):381-7.https://doi.org/10.1016/j.tins.2014.05.002

11.Vit VV. [The structure of the human visual system]. Odessa:Astroprint; 2003 Russian

12.Kordium V, Chaikovsky Yu, Irodov D, Drahulian M, et al. Modelling of systemic lesion of organism for development of multitarget cellular and cytokine therapy. Biopolym Cell. 2016;32(5):381-94.https://doi.org/10.7124/bc.000934

13.Liu B, Hunter D, Smith A, et al. The capacity of neural crest-derived stem cells for ocular repair. Birth Defects Res C Embryo Today. 2014 Sep;102(3): 299-308.https://doi.org/10.1002/bdrc.21077

14.Vasyliev R., Rodnichenko A., Shamalo S. et al. Effects of Neural Crest-Derived Multipotent Stem Cells on Regeneration of an Injured Peripheral Nerve in Mice. Neurophysiology. 2015;47(1):80-83.https://doi.org/10.1007/s11062-015-9501-6

15.Sieber-Blum M, Schnell L, Grim M, et al. Characterization of epidermal neural crest stem cell (EPI-NCSC) grafts in the lesioned spinal cord. Mol Cell Neurosci. 2006 May-Jun;32(1-2):67-81.https://doi.org/10.1016/j.mcn.2006.02.003

16.Sieber-Blum M. Epidermal neural crest stem cells and their use in mouse models of spinal cord injury. Brain Res Bull. 2010 Oct 30;83(5):189-93.https://doi.org/10.1016/j.brainresbull.2010.07.002

17.Biernaskie J, Sparling J, Liu J, et al. Skin-Derived Precursors Generate Myelinating Schwann Cells That Promote Remyelination and Functional Recovery after Contusion Spinal Cord Injury. J Neurosci. 2007 Sep 5;27(36):9545-59.https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.1930-07.2007

18.Dupin E, Coelho-Aguiar J. Isolation and differentiation properties of neural crest stem cells. Cytometry A. 2013 Jan;83(1):38-47.https://doi.org/10.1002/cyto.a.22098

19.Krejci E, Grim M. Isolation and characterization of neural crest stem cells from adult human hair follicles. Folia Biol (Praha). 2010;56(4):149-57.https://doi.org/10.14712/fb2010056040149

20.Sieber-Blum M, Grim M, Hu YF, Szeder V. Pluripotent neural crest stem cells in the adult hair follicle // Dev Dyn. 2004 Oct;231(2):258-69.

https://doi.org/10.1002/dvdy.20129

21.Sieber-Blum M, Grim M. The adult hair follicle: Cradle for pluripotent neural crest stem cells. Birth Defects Res C Embryo Today. 2004 Jun;72(2):162-72.https://doi.org/10.1002/bdrc.20008

22.Yang R, Xu X. Isolation and Culture of Neural Crest Stem Cells from Human Hair Follicles. J Vis Exp. 2013 Apr 6;(74).https://doi.org/10.3791/3194

23.Kolomiitsev A, Chaikovsky Yu, Tereschenko T. [Rapid method for impregnation of the components of the peripheral nervous system with silver nitrate]. Morfologiia (form. Arkh Anat Gistol Embriol). 1981;8:93-6. Russian

24.Morgan-Warren PJ, Berry M, Ahmed Z, et al. Exploiting mTOR Signaling: A Novel Translatable Treatment Strategy for Traumatic Optic Neuropathy? Invest Ophthalmol Vis Sci. 2013 Oct 23;54(10):6903-16.https://doi.org/10.1167/iovs.13-12803

25.Narciso M, Hoko? J, Martinez A. Watery and dark axons in Wallerian degeneration of the opossum's optic nerve: different patterns of cytoskeletal breakdown? An Acad Bras Cienc. 2001 Jun;73(2):231-43.https://doi.org/10.1590/S0001-37652001000200008

26.Saggu SK, Chotaliya HP, Blumbergs PC, Casson RJ. Wallerian-like axonal degeneration in the optic nerve after excitotoxic retinal insult: an ultrastructural study. BMC Neurosci. 2010;11:97.https://doi.org/10.1186/1471-2202-11-97

27.Yu F, Zhang R. A novel model of optic nerve injury established by microsurgery using the pterional approach in cats. Neurol India. 2011 May-Jun;59(3):355-61.https://doi.org/10.4103/0028-3886.82726

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-06-04

Як цитувати

[1]
Чепурний, Ю.В. et al. 2026. Морфологічні зміни зорового нерва після травми за умов застосування стовбурових клітин в експерименті. Ukrainian Journal of Ophthalmology . 5 (Чер 2026), 50–55. DOI:https://doi.org/10.31288/oftalmolzh201755055.

Номер

Розділ

Експериментальні дослідження

Статті цього автора (авторів), які найбільше читають

Схожі статті

1 2 3 4 5 6 7 > >> 

Ви також можете розпочати розширений пошук схожих статей для цієї статті.